ALFA. Revista de Investigación en Ciencias
Agronómicas y Veterinarias
Septiembre-diciembre 2024 / Volumen 8, Número 24
ISSN: 2664-0902 / ISSN-L: 2664-0902
https://revistaalfa.org
pp. 717 - 728
Actividad
antagonista de PGPR en nematodo fitoparásito Pratylenchus spp. en Musa
paradisiaca (Musa
acuminata
× M. balbisiana) vc cavendish
PGPR
antagonistic activity in plant parasitic nematode Pratylenchus spp. in Musa paradisiaca (Musa acuminata × M.
balbisiana) vc cavendish
Atividade antagônica de PGPR sobre o nematoide parasita de plantas
Pratylenchus spp.em Musa paradisiaca
(Musa
acuminata × M. balbisiana) vc cavendish
Jorge Abel Crespo Ávila1
jcrespoa@uteq.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-7127-2818
Cecibel Carolina Carranza
Cárdenas1
cecibel393@gmail.com
https://orcid.org/0009-0003-8289-975X
Angel Virgilio Cedeño Moreira
acedenom@uteq.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-6564-5569
Luis Fernando Vera Benites 1
luisf.vera@uteq.edu.ec
https://orcid.org/0000-0003-4567-1919
Maria Sol Chevez Villanueva 2
solchevezv@hotmail.com
https://orcid.org/0009-0004-6831-5049
1Universidad Técnica Estatal De Quevedo. Quevedo, Ecuador
2Universidad Agraria del Ecuador. Guayaquil, Ecuador
Artículo recibido 9 de junio 2024 | Aceptado
9 de julio 2024 | Publicado 20 de septiembre 2024
Escanea
en tu dispositivo móvil o revisa este artículo en:
https://doi.org/10.33996/revistaalfa.v8i24.297
RESUMEN
El uso excesivo de nematicidas para el
control de Pratylenchus spp. en el cultivo de banano incide en la reducción de
microorganismos benéficos del suelo. Para lo cual el objetivo fue evaluar la
actividad antagonista de Rizobacterias Promotoras del Crecimiento Vegetal
(PGPR) en el control de Pratylenchus spp. El estudio se desarrolló en áreas del
departamento de Biotecnología de la Universidad Técnica Estatal de Quevedo,
Ecuador. Se aplicaron diseño experimental completamente aleatorizado con cinco
tratamientos, tres consorcios de rizobacterias y dos controles (químico y sin aplicación).
Se evaluaron variables morfológicas y fisiológicas en las plantas, además del
número de nematodos en suelo y raíz. Los resultados mostraron que la
combinación de cepas (Acinetobacter, Serratia, Pseudomonas) presentó mayor peso
y longitud radicular (164,7g y 48,7 cm), además del contenido de raíces
funcionales, un mayor contenido de clorofila y reducción de la población de
nematodos en raíces y suelo en más del 50%. Por lo que las PGPR constituyen una
alternativa biológica efectiva para el control de fitonematodos.
Palabras clave: Antagonismo de
Rizobacterias; Consorcio de bacterias; Microorganismos benéficos del suelo;
Musáceas; Fitonematodos; Sostenibilidad
ABSTRACT
The excessive use of
nematicides for the control of Pratylenchus spp. in banana crops has an impact
on the reduction of beneficial microorganisms in the soil. The objective was to
evaluate the antagonistic activity of Plant Growth Promoting Rhizobacteria
(PGPR) in the control of Pratylenchus spp. The study was developed in areas of
the Biotechnology Department of the State Technical University of Quevedo,
Ecuador. A completely randomized experimental design was applied with five
treatments, three consortia of rhizobacteria and two controls (chemical and
without application). Morphological and physiological variables were evaluated
in the plants, in addition to the number of nematodes in soil and roots. The
results showed that the combination of strains (Acinetobacter, Serratia,
Pseudomonas) had a higher root weight and length (164.7 g and 48.7 cm), in
addition to the functional root content, a higher chlorophyll content and a
reduction of the nematode population in roots and soil by more than 50%.
Therefore, PGPR constitute an effective biological alternative for the control
of phytonematodes.
Key words: Rhizobacteria
antagonism; Bacterial consortium, Beneficial soil microorganisms; Musaceae;
Phytonematodes; Sustainability
RESUMO
O uso excessivo de nematicidas para controle de Pratylenchus spp. No
cultivo da bananeira afeta a redução de microrganismos benéficos do solo. Para
o qual objetivou-se avaliar a atividade antagônica de Rizobactérias Promotoras
de Crescimento Vegetal (PGPR) no controle de Pratylenchus spp. O estudo foi
desenvolvido em áreas do departamento de Biotecnologia da Universidade Técnica
Estadual de Quevedo, Equador. Foi aplicado delineamento experimental
inteiramente casualizado com cinco tratamentos, três consórcios de
rizobactérias e duas testemunhas (químicas e sem aplicação). Foram avaliadas
variáveis morfológicas e fisiológicas nas plantas, além do número de nematóides
no solo e nas raízes. Os resultados mostraram que a combinação de cepas
(Acinetobacter, Serratia, Pseudomonas) apresentou maior peso e comprimento de
raiz (164,7g e 48,7 cm), além do conteúdo de raízes funcionais, maior teor de
clorofila e redução na população de nematóides nas raízes e no solo em mais de
50%. Portanto, os PGPR constituem uma alternativa biológica eficaz para o
controle de fitonematoides.
Palavras-chave: Antagonismo de
rizobactérias; Consórcio bacteriano; Microrganismos benéficos do solo;
Musaceae; Fitonematoides; Sustentabilidade
INTRODUCCIÓN
El cultivo del banano es de
importancia para el Ecuador por los ingresos que este genera para el estado y
las empresas del sector privado. La exportación bananera representa el 20% del
producto interno bruto (PIB) general y aproximadamente el 35% del PIB agrícola
(1). La reducción de la producción del banano se ve afectado por problemas de
hongos, bacterias, virus y el ataque de nematodos parásitos principalmente del
género Pratylenchus (2).
Es por esto que, nematodo del género Pratylenchus spp. (Lesionador) es causante de grandes pérdidas
del cultivo del banano y se encuentra distribuido a nivel mundial. Sus daños
son básicamente mecánicos, con la formación de lesiones al sistema radicular
que luego son invadidas por patógenos secundarios como bacterias u hongos,
acelerando el proceso de degradación de las raíces. Estos penetran en las
raíces jóvenes de las plantas hospedadoras, allí migran a través de ellas, a
menudo destruyendo células (3).
De ahí que, el uso intensivo de
nematicidas organofosforados y carbofurados resultan perjudiciales para la
salud humana y el medio ambiente causando disminución de la microfauna del
suelo (4); como a esta situación, el empleo de alternativas sustentables, surge
el uso de las bacterias promotoras del crecimiento de plantas por sus siglas en
inglés (PGPR) como alternativa biológica para el control de distintos
nematodos, además de favorecer el crecimiento de las plantas por la producción
de fitohormonas (5).
En este sentido, la utilización
de PGPR como bio-controladores para los nematodos parásitos de raíces en banano
como Pratylenchus spp. actúan
como promotores del crecimiento de las plantas sin alterar el equilibrio
microbiológico del suelo (6,7), contribuyendo así con el desarrollo del sector
bananero del Ecuador. Además, según lo planteado por Pineda-Escobar et al. (8)
está comprobado la existencia de un sinergismo por la combinación de los
biocontroladores de origen bacteriano para el control de Pratylenchus spp. lo cual favorece al
incremento de la masa radicular y demás aspectos morfológicos y fisiológicos de
la planta.
Por lo anteriormente expuesto, la
Esta investigación tuvo como objetivo evaluar la actividad antagonista de
Rizobacterias Promotoras del Crecimiento Vegetal (PGPR) en el control de
Pratylenchus spp. Con lo que se brinda mayor protección a los cultivos,
garantizando producción sostenible, y de mayor importancia económica del
Ecuador, minimizando el daño ambiental sobre el suelo y el agua.
MATERIALES
Y MÉTODOS
Esta investigación se realizó en
los laboratorios de Biotecnología de la Universidad Técnica Estatal de Quevedo
(UTEQ), localizado en el Campus Universitario “Manuel Haz Álvarez” ubicado en
el km 1.5 vía Quevedo – Santo Domingo, Ecuador. Sus coordenadas geográficas son
01° 01” de latitud Sur y 79° 47” de longitud Occidental, ubicada a una altura
de 73 m.s.n.m, ya que las condiciones de clima y fundamentalmente la variabilidad
de la humedad del suelo ejerce un factor fundamental para el desarrollo de las
Rizobacterias Promotoras del Crecimiento Vegetal.
Para realizar el estudio
inicialmente se colectaron 5 submuestras al azar de 100 g de raíces de plantas
madre e hijo de una plantación comercial de Baby Banana (Musa paradisiaca), ubicado en la finca el
Paraíso, Cantón La Maná, Ecuador. Las muestras fueron llevadas en hieleras
térmicas a una temperatura promedio de 4°C para el laboratorio de microbiología
y biología de la UTEQ.
Para el aislamiento del nematodo
Pratylenchus spp, las muestras de raíces fueron lavadas con una solución de
hipoclorito de sodio al 1 % por 30 s y se enjuagó con abundante agua destilada.
Las raíces se cortaron en trozos de 4 cm de largo y se licuaron 100 g de raíces
en 500 ml de agua por 1 min con un reposo de 10 min. La suspensión se vertió
sobre un juego superpuesto de tamices marca Fisher de 500 µm, 90 µm y 25 µm.
Los restos de raíces retenidas en la criba de 90 µm, se transfirieron al embudo
de Baermann con filtro de papel, con 40 ml de agua. Pasadas las 48 horas, todas
las formas activas de nematodos pasaron a través del filtro de papel y se
recogidas en un pequeño volumen de agua (5-10 ml).
Para la identificación de Pratylenchus spp, se utilizaron
las claves taxonómicas del género Pratylenchus propuestas por Loof (9), Handoo
y Golden (10). En la identificación morfológica se empleó un microscopio
OLYMPUS a 10X - 40X de magnificación para lo cual se tomaron 30 µl de muestra
transfiriendo a un vidrio de reloj para su observación, para establecer las
características morfométricas de Pratylenchus
spp. descritas por Filipjev y Schuurmans (11).
Para
la actividad antagonista y promotora de crecimiento de las PGPR’s en
condiciones de invernadero. Se usó un
sustrato con suelo, y turba en proporción 2:1 las mismas fueron solarizadas por
la metodología descrita por Navarro (12). Se utilizó plantas meristemáticas
Musa acuminata var. Williams. Las rizobacterias fueron procedentes del banco de
germoplasma de la UTEQ y se seleccionaron por ser productoras de metabolitos
antagónicos como se muestra en la Tabla 1. Las mismas reactivadas en 20 mL de
KBL peptona de carne 20,0 g/L; glicerol 15,0 mL; fosfato dipotásico 1,5 g/L;
sulfato de magnesio heptahidratado 1,5 g/L; agua destilada (pH 7,2),
suplementado con chloramphenicol (13 μg/mL), ampicilina (40 μg/mL) por 48 h. El
cultivo bacteriano se recuperó por sedimentación y se inoculó 10 mL (7,1E+8) de
forma individual en el medio M3 (melaza 20 g/L; harina de maíz 20 g/L; sal en
grano 5,0 g/L y glicerina 7,0 mL con pH 6,5) durante 24 h en fermentadores de 2
L con entrada de aire. Durante 8, 15, 22, 35 y 45 Días Después del Trasplante
(DDT), en los tratamientos con bacterias se inocularon 50 ml/planta de una solución
al 10 % de consorcios bacterianos como se puede observar en la Tabla 2 y la
aplicación del control químico (Rugby ®) y absoluto (agua destilada) se
aplicaron a los 30 DDT.
Posteriormente, 30 días después
del trasplante se inocularon aproximadamente 12000 nematodos del género
Pratylenchus spp en los tratamientos correspondientes, alrededor del sistema
radical se realizó perforaciones en el suelo para la inoculación. Los nematodos
inoculados fueron extraídos de una plataforma de reproducción de discos de zanahoria
(60%) y de raíces de una plantación infestada con 40% de nematodos del género
Pratylenchus spp con la ayuda de una micropipeta, cuya solución de 10 mL fue
aplicada alrededor de cada planta. Todas las plantas tuvieron una fertilización
base mediante la aplicación de 5 g /planta del fertilizante completo NPK
(10-30-10); esta labor se realizó a los 20, 30, 40 días. Durante el periodo
experimental todas las plantas se mantuvieron en CC.
Tabla 1.
Bacterias productoras de metabolitos antagónicos.
|
|
Metabolitos
antagónicos |
|
||||
|
Cepas |
Fluorescente |
Proteasa |
HCN |
Pirrolnitrina |
Catalasa |
Cultivo de
procedencia |
|
A. calcoeceticus BMR2-12 |
+ |
|
|
+ |
+ |
Banano |
|
S. marcescens PM3-8 |
++ |
+ |
+ |
|
+ |
Banano |
|
K. varicola
BO3-4 |
++ |
+ |
+ |
+ |
+ |
Banano |
|
P. veronii R4 |
++ |
|
+ |
+ |
+ |
Uva |
Variables
evaluadas: A los
70 días después del trasplante (DDT) se evaluaron las siguientes variables;
Peso total de raíces por planta, número de raíces totales, porcentaje de raíces
funcionales y no funcionales, longitud de raíces primarias (cm) con la metodología
de Karamura y Karamura (13). La
densidad poblacional de Pratylenchus
spp se evaluó por el método descrito por Fierro et al. (14). Para
determinar la concentración de clorofila en plantas se seleccionó la parte
media de la hoja, las mismas fueron lavadas con agua destilada y alcohol al 70
°C durante un minuto. Para la extracción y cuantificación de clorofila se
determinó mediante la técnica usada por Wintermans y De Mots (15).
Diseño
experimental y análisis de los datos: El experimento de actividad
antagonista de rizobacterias sobre Pratylenchus spp en invernadero se ejecutó
un diseño completamente al azar (DCA). Se realizaron cinco tratamientos con
tres réplicas, se evaluaron 9 plantas por tratamiento. Los datos fueron
sometidos al análisis de varianza (ANDEVA) y separados por procedimiento de
comparación múltiple de Tukey, al nivel de significancia de (p≤0,05). Para el
análisis se utilizó el software estadístico Infostat 2020.
RESULTADOS
Para la caracterización
morfológica de nematodo Pratylenchus spp de las muestras colectadas del sistema
radicular se identificó el ciclo de ovoposición de Pratylenchus spp (J1), de
raíces infectadas del cultivar M. paradisiaca determinando su forma ovoide,
alargados con longitudes de entre 84-99 µm y diámetros de entre 35-44 µm, con
periodo de eclosión de los huevos de nematodos entre 8-10 días Figura 1.
Figura 1. Fases de
ovoposición de nematodos: A. Huevo
de Pratylenchus spp. primeras horas de ovopositado; B. Desarrollo del nematodo en estadio J1, Huevo ovopositado primer
día de edad (Etapa de mitosis); C.
Huevo con 3 días de ovopositado, D.
Huevo con 5 días de ovopositado, E.
Huevo con 7 días de ovopositado, el nematodo está completamente desarrollado, F. Huevo de nematodo con 8 días de
ovopositado, mostrándose el nematodo, con órganos y estructuras ya
desarrolladas.
Se identificaron nematodos
juveniles 2 (J2) del género Pratylenchus spp. en muestras de tejido radicular
de M. paradisiaca. Los nematodos presentan características morfométricas y
morfológicas específicas, incluyendo un cuerpo filiforme y elongado, una cabeza
aplanada, un estilete bien desarrollado y una cola cónica pero redondeada al
final. La hembra es más larga que el macho, con longitudes que oscilan entre
340-810 micrómetros. La cabeza es angosta y suavemente redondeada, con un
estilete fuertemente esclerotizado y ovarios ubicados entre el intestino y la
vulva. La vulva se encuentra a un 70-80% de la longitud del nematodo y la cola
es cónica pero redondeada al final Figura 2.
Figura 2.
Características morfológicas de Pratylenchus J2 A. nematodo hembra, B.
parte anterior del nematodo hembra, C.
parte posterior del nematodo hembra. D.
nematodo macho.
Para los caracteres morfológicos
de las plantas de M. paradisiaca están influenciados por la inoculación de
consorcio bacteriano, promoviendo mayor número de raíces e incrementando el
peso radicular a diferencia de los controles. Se verificó la combinación (R4 -
BMR2-12 – PM3-8) incremento el número de raíces con 29,6 y el peso de raíces (164,7 g)
en comparación a los demás tratamientos. La longitud no presentó diferencia estadística
entre tratamientos, alcanzando una longitud que oscila entre 43,9 y 48,7 cm
Tabla 2.
Tabla 2. Efectos de las combinaciones
bacterianas sobre los caracteres morfológicos de las raíces
|
Tratamientos |
Número |
Peso, g |
Longitud, cm |
|
R4 - BO3-4 - BMR2-12 |
27,2 ab |
133, 0 b |
45,2bc |
|
R4 - PM3-8 - BO3-4 |
27,3 ab |
137,2 b |
48,7a |
|
R4 - BMR2-12 – PM3-8 |
29,6 a |
164,7 a |
46,7b |
|
Control Químico |
21,0 bc |
76,8 c |
43,9c |
|
Control (Agua) |
19,3 c |
66,1 c |
44,8c |
|
EE± |
1,934 |
4,054 |
2,867 |
|
P |
0,021 |
0.015 |
0,024 |
abc Valores con letras
no comunes difieren para P<0.05 (Tukey)
La aplicación del consorcio
bacteriano (R4-BO3-4- BMR2-12) incrementó significativamente el porcentaje de
raíces funcionales en las plantas con 70.34% en comparación al Control (54,8%).
Las combinaciones (R4-PM3-8-BO3-4) y (R4-BMR2-12–PM3-8) también
mostraron resultados positivos, con 64,9 y 68% respectivamente. En contraste,
las plantas sin inoculante bacteriano presentaron un porcentaje de raíces no
funcionales significativamente mayor, con 45,5%. Esto demuestra que las
rizobacterias, al tener su capacidad promotora de crecimiento incrementan la
cantidad de raíces y la protección por la producción de metabolitos
antagónicos, disminuyendo el número de raíces afectadas Tabla 3.
La aplicación de bacterias en
consorcio (R4-BO3-4-BMR2-12) redujo la población de nematodos en el sistema
radicular y en el suelo en comparación al control con aplicación de agua. El
control químico (Rugby) redujo la población de nematodos fitopatógenos en el
suelo y raíces con 2250 nematodos/100 g de suelo y 2025 nematodos/50 g de
raíces respectivamente. Sin embargo, la repuesta de (R4–BO3-4–BMR2-12) también
mostró disminución con 3000 nematodos/100 g de suelo y 2025
nematodos/50 g de raíces. Las combinaciones (R4-BM2-12-PM 3-8) indujeron a un
incremento a la clorofila total con 18,7 mg/cm2 en comparación a los
demás tratamientos. La menor concentración de clorofila total se obtuvo en las
plantas sin inoculantes con 16,2 y 16,5 mg/cm2 Tabla 4.
Tabla 3. Efecto de las combinaciones
bacterianas sobre el desarrollo de las raíces
|
Tratamientos |
Raíces funcionales, % |
Raíces no funcionales, % |
|
R4 - BO3-4 - BMR2-12 |
70,3 a |
29,7 c |
|
R4 - PM3-8 - BO3-4 |
64,9 a |
35,1 b |
|
R4 - BMR2-12 – PM3-8 |
69, 0 a |
31,0 c |
|
Control Químico |
68,0 a |
32,6 c |
|
Control (Agua) |
54,8 b |
45,2 a |
|
EE± |
2,461 |
1,054 |
|
P |
0,0356 |
0.0142 |
abc
Valores con letras no comunes difieren para P<0.05 (Tukey)
Estos resultados indican que la
efectividad del control químico sobre la población de nematodos, aunque pueden
afectar los indicadores aspectos morfológicos y fisiológicas de la planta,
situación contraria al uso de rizobacterias que incrementa el desarrollo
radicular y disminuye la población de nematodos e incrementa la concentración
de clorofila total Tabla 4.
Tabla 4. Efecto de las combinaciones
bacterianas sobre la población de nematodos en suelo, raíces y clorofila total.
|
Tratamientos |
Población nematodos en 100 g de suelo |
Población nematodos en 50 g de raíces |
Clorofila total (mg/cm2) |
|
R4 - BO3-4 - BMR2-12 |
3000 c |
2100 b |
21,7 a |
|
R4 - PM3-8 - BO3-4 |
4350 b |
2325 b |
21,2 a |
|
R4 - BMR2-12 – PM3-8 |
3600 c |
2325 b |
19,0 c |
|
Control Químico |
2250 d |
2025 b |
20,6 b |
|
Control (Agua) |
6750 a |
5100 a |
18,7 c |
|
EE± |
10,232 |
9,029 |
0,678 |
|
P |
0,0145 |
0,0341 |
0,010 |
abc Valores con letras no comunes difieren para P<0.05
(Tukey)
DISCUSIÓN
Las rizobacterias tienen una
eficiencia en estimular el desarrollo radicular de las plantas,
Sangoquiza-Caiza et al. (16) señalan que estos resultados son explicados por
que los bioinoculante basados en cepas de Azospirillum y Pseudomonas tienen una
alta capacidad de producir ácido indolacético (AIA) provocando el desarrollo de
las raíces y la elongación celular, está demostrado que existe influencia del
Azospirillum en la formación de raíces laterales debido a la secreción de
nitritos, a su vez la producción de AIA y la alta sensibilidad de las raíces a
esta hormona son fundamentales para la respuesta a la inoculación de
Azospirillum y Pseudomonas, estas últimas aplicadas de manera exitosa en el
desarrollo del cultivo de M.
paradisiaca.
En el caso de la mayor longitud de raíces a juicio de Aguilar-Paredes et al. (17) se debe a que los consorcios
bacterianos producir sustancias que pueden inducir la producción de la enzima
1-aminociclopropano 1-carboxilato desaminasa (ACC), que reduce el nivel de
etileno en las raíces de los cultivos, mejorando así la longitud y densidad de
las raíces, cuyo efecto benéfico se ve en una mayor capacidad de absorción de
nutrientes y capacidad de exploración para captación de agua y fósforo.
Mientras que, los resultados
reportados por López Aguilar et al. (18) fueron contrarios a los alcanzados en
el actual estudio, ya que al usar rizobacterias productoras de cianuro de
hidrogeno para el control de nematodos no encontraron cambios en el número de
raíces funcionales, lo cual se debe según Aguirre et al. (19) a la fluctuación
en el peso de las raíces funcional responden a variables climáticas
(precipitación), a las condiciones edáficas y el manejo del cultivo, en este
caso la mayor precipitación y suelo de clase textural arcilloso puede incidir
en estas variables, además del daño que
pueden ocasionar los nematodos.
De ahí que, uno de los efectos
positivos del control de nematodos es la reducción del daño a las raíces expresado por el número
de raíces no funcionales, sin embargo los resultados muestran que el porcentaje
de raíces no funcionales superan el 20 % que fue reportado por (20) en
tratamiento con nematicidas, pero se debe destacar que además del daño causado
por el nematodo un porcentaje importante de raíces no funcionales, pude ser
explicado al contenido de arcilla, dado que muy pesados con continuos turnos de
riego pueden causar pudrición de la masa radicular en los primeros 15 cm del
suelo (21).
La reducción del daño aumenta el
número de raíces, especialmente las funcionales como consecuencias del efecto
antagónico de los consorcios bacterianos, lo cual es explicado por la inducción
de mecanismos de defensa por parte del rizobacterias (22), así como las
secreciones de compuestos con cualidades inhibitorias que podrían llegar hasta
una reducción del 60% de la población de nematodos (23).
En este sentido, Avellán-Vásquez
(24) las fitohormonas como las citoquinas que mejoran la reproducción de los
tejidos vegetales madre, además ayuda a la proliferación y división celular, lo
que se manifiesta en un mayor desarrollo vegetativo, que en este caso se
manifiesta como pseudotallos más largos, que además de controlar el crecimiento
de las bacterias promotoras del crecimiento utilizadas de forma sinérgica,
ayudando en el control del nematodo Pratylenchus.
Por su parte, Niola et al. (25)
Estos resultados son contrarios a los obtenidos en la investigación
desarrollada por en la cual el tratamiento donde se incorporaba rizobacterias +
biocarbón aportó los mejores resultados manifestándose con una emisión foliar
de 0,9 hoja por semana, lo que demuestra que el uso de consorcios microbianos
es promisorios para promover el desarrollo foliar en comparación a otros
tratamientos con biochar o incluso donde se propone el uso de microrganismos,
cuya eficiencia depende además de las condiciones ambientales y de la
adaptación de la cepa que se inocula a la rizósfera (26).
Con la reducción de las
poblaciones de nematodos se debe a que los bioformulados poseen la capacidad de
secretar metabolitos antagónicos tales como PR (Proteasa), HCN (Cianuro de
hidrógeno) y Prn (Pirrolnitrina), los cuales tienen efecto antagónico sobre las
poblaciones de nematodos según Martínez et al. (27), lo cual fue demostrado de
manera satisfactoria en un investigación llevada a cabo por Macías Holguín et
al. (28) bajo las mismas condiciones de estudio, donde la producción de
compuestos bioactivos lograban controlar enfermedades fitopatógenas como R. similis.
Los niveles de clorofila fueron
similares a los obtenidos por Ávila-Campoverde et al. (29), quienes encontraron
un aumento en el contenido de clorofila, debido a la estimulación del
enraizamiento por ácidos húmicos y algas marinas, aunque estos investigadores
no midieron las poblaciones microbianas, está comprobado que este tipo de
bioformulados incrementan la actividad microbiana y la diversidad de organismo
benéficos en la rizosfera lo que sugiere un mayor vigor y salud de las plantas,
producto de la acción de las bacterias promotoras del crecimiento.
CONCLUSIONES
La mejor combinación bacteriana
en los ensayos en campo para el control de Pratylenchus fueron las cepas P. veronii (R4), A. calcoaceticus (BM2-12) y S. marcescens (PM3-8) en la cual se
obtuvo el mayor control de nematodos. Además de aumentar la longitud, peso de
raíces funcionales y la concentración de clorofila total, lo cual se refleja en
un mayor desarrollo en las plantas de banano.
CONFLICTO DE
INTERESES.
Los autores declaran que no existe conflicto de intereses
para la publicación del presente artículo científico.
REFERENCIAS
BIBLIOGRÁFICAS
1. León L,
Arcaya M, Barbotó N, Bermeo Y. Ecuador: Análisis comparativo de las
Exportaciones de banano orgánico y convencional e incidencia en la Balanza
Comercial, 2018. Revista Científica y
Tecnológica UPSE (RCTU), 2020; 7(2),
38-46. https://doi.org/10.26423/rctu.v7i2.521
2. Nyang’au D, Atandi J, Cortada L., Nchore S, Mwangi M,
Coyne D. Diversity of nematodes on banana (Musa spp.) in Kenya linked to
altitude and with a focus on the pathogenicity of Pratylenchus goodeyi. Nematology, 2021, 24(2), 137-147.
https://brill.com/view/journals/nemy/24/2/article-p137_2.xml
3. Mehmood N, Khanum T. Description of Pratylenchus
siddiqi n. sp. from banana (Musa acuminata L.) Malir Cantt, Karachi, Sindh,
Pakistan. Plant Protection.
2021; 5(2), 89-93. Available:
https://doi.org/10.33804/pp.005.02.3667
4. Desaeger J, Wram C, Zasada I. New
reduced-risk agricultural nematicides-rationale and review. Journal of Nematology. 2020; 52(1), 1-16.
https://doi.org/10.21307/jofnem-2020-091
5. Liu G, Lin X, Xu S, Liu G, Liu F, Mu W. Screening,
identification and application of soil bacteria with nematicidal activity
against root‐knot nematode (Meloidogyne incognita) on tomato. Pest management science. 2020; 76(6), 2217-2224.
https://doi.org/10.1002/ps.5759
6. Beltran-Garcia M, Martinez-Rodriguez A, Olmos-Arriaga
I, Valdez-Salas B, Chavez-Castrillon Y, Di Mascio P, White J. Probiotic
endophytes for moré sustainable banana production. Microorganisms. 2021; 9(9),
1805. https://doi.org/10.3390/microorganisms9091805
7. Araújo R, Ribeiro M, Rodrigues F, Silva B, Dória J
Pasqual M. Association of growth-promoting bacteria and hydroponic system
aiming at reducing the time of production of banana seedlings. Archives of Agronomy and Soil Science.
2023; 69(8), 1209-1222.
https://doi.org/10.1080/03650340.2022.2078965
8. Pineda-Escobar M, Prodan S, Castaneda-Alvarez C,
Aballay E. Plant growth-promoting rhizobacteria for protecting walnut plants
from root-lesion nematode (Pratylenchus vulnus). European Journal of Plant Pathology. 2023;.167(4), 801-809.
https://doi.org/10.1007/s10658-023-02768-y
9. Loof A. The genus Pratylenchus
Filipjev, 1936 (Nematoda: Pratylenchidae): a review of its anatomy, morphology,
distribution, systematics and identification (pp. iv+-50). 1978;
[https://www.cabidigitallibrary.org/doi/full/10.5555/19790855475
10. Handoo Z, Golden A. A key and diagnostic compendium
to the species of the genus Pratylenchus Filipjev, 1936 (lesion nematodes). Journal of Nematology. 1989. 21(2), 202.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2618922/pdf/202.pdf
11. Filipév I, Stekhoven H. A manual of agricultural helminthology. Brill Archive.1959.
https://books.google.co.ve/books?id=v8YUAAAAIAAJ&source=gbs_navlinks_s
12. Navarro
J. Efecto de la solarizacion del suelo sobre la poblacion de malezas y del
hongo Rhizoctonia solani durante la estacion lluviosa en Alajuela, Costa Rica. Agronomía Costarricense. 1989; 15.
https://agris.fao.org/search/en/providers/123819/records/64735a19e17b74d2225131fb
13. Karamura E, Karamura D. Banana morphology—part II:
the aerial shoot. In Bananas and
plantains (pp. 190-205). Dordrecht: Springer Netherlands. 1995.
https://link.springer.com/chapter/10.1007/978-94-011-0737-2_8
14. Fierro
A, Draguiche J, Ramírez T. Evaluación de nuevos híbridos y selecciones de
bananos (Musa spp.) frente a nematodos fitopatógenos. Centro Agrícola. 2006; 33(1), 27.
http://cagricola.uclv.edu.cu/descargas/pdf/V33-Numero_1/cag061061468.pdf
15. Wintermans F, De Mots A. Spectrophotometric
characteristics of chlorophylls a and b and their phenophytins in ethanol. Biochimica et Biophysica Acta
(BBA)-Biophysics including Photosynthesis. 1965;.109(2), 448-453. https://doi.org/10.1016/0926-6585(65)90170-6
16. Sangoquiza-Caiza C, Zambrano-Mendoza J,
Borgues-García M, Cho K. RESPONSE OF FLOUR CORN (Zea mays L. var. Amylacea) TO
THE. 2024;.39(1). http://doi.org/10.17163/lgr.n39.2024.09
17. Aguilar-Paredes A, Valdés G, Nuti M. Ecosystem
functions of microbial consortia in sustainable agriculture. Agronomy. 2020; 10(12), 1902.
https://doi.org/10.3390/agronomy10121902
18. López-Aguilar C, Barrezueta-Unda S, Aguilar E. Efecto
de hongos entomopatógenos para el control de nematodos en el sistema radicular
del banano. Revista Científica Agroecosistemas.
2022; 10(3), 107-114.
https://aes.ucf.edu.cu/index.php/aes/article/view/568
19. Aguirre O, Chávez C, Giraud A, Araya M. Frequencies
and population densities of plant-parasitic nematodes on banana (Musa AAA)
plantations in Ecuador from 2008 to 2014. Agronomía colombiana. 2016; 34(1), 61-73. https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v34n1.53915
20.
Vargas-Calvo A. Efecto del desmane intensivo sobre el desarrollo del racimo de
banano. Agronomía Mesoamericana.
2014; 25(1), 85-98.
https://www.scielo.sa.cr/pdf/am/v25n1/a09v25n1.pdf
21. Lazo Y, Moreno A,
Olivo G, Valencia E, Crespo Y, Quintana Y. (2017). Efecto de la aplicación de
microorganismos eficientes en la producción de Musa paradisiaca variedad
valery. Revista Amazónica Ciencia y
Tecnología. 2017. 6(3), 191-200.
https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=6413707
22. Kisaakye J, Fourie H, Coyne D, Cortada L, Khamis F,
Subramanian S, Haukeland S. Endophytic fungi improve management of the
burrowing nematode in banana (Musa spp.) through enhanced expression of
defence-related genes. Nematology.
2023; 25(4), 427-442.
https://doi.org/10.1163/15685411-bja10229
23. Crespo-Clas Á, Canchignia-Martínez H, Fiallos R.
Nematodes and root system are affected by rhizobacterial consortium in the third
generation of commercial banana plants. Revista de agricultura neotropical. 2023. 10(3),
e7725-e7725. https://doi.org/10.32404/rean.v10i3.7725
24.
Avellán-Vásquez L, Alcívar-Vite S, Pazmiño-Anzules A, Cedeño-Zambrano J.
Citoquininas en el crecimiento de cultivares de plátano Musa AAB en el primer
ciclo de producción. La técnica.
2023. 13(1), 24-29.
https://revistas.utm.edu.ec/index.php/latecnica/article/view/5785/7027
25. Niola J,
Guerrero N, Batista M, León J. Efectos de dos enmiendas edáficas sobre
parámetros agronómicos de producción en banano (Musa X paradisiaca l.). Revista Científica Agroecosistemas.
2021. 9(3), 104-118.
https://aes.ucf.edu.cu/index.php/aes/article/view/499
26.
Cevallos-Jungal G, León I, Guerrero N, Batista M. Efectos del biocarbón y
microorganismos eficientes en las fases fenológicas del cultivo de banano. Metropolitana de Ciencias Aplicadas.
2024. 7(1), 287-294.
https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=9288340
27. Martínez
H, Chávez-Arteaga K, Guato-Molina J, Peñafiel-Jaramillo M, Mestanza-Uquillas C.
Bacterias fluorescentes productoras de metabolitos antagónicos de cultivares
nativos de Musa sp. y su diversidad filogenética al gen ARNr 16S. Ciencia y Tecnología. 2018. 11(2), 17-29.
https://doi.org/10.18779/cyt.v11i2.204
28. Macías
C, Padilla C, Quintana N, Martínez F, Moreira V, Gonzales E. Efecto de
bioformulados bacterianos como controladores de Radopholus similis y
potenciadores del desarrollo de plántulas de banano (Musa acuminata) cultivar
Williams. Revista Ciencia y Tecnología.
2023. 16(2), 9-16.
https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=9617497
29. Ávila E,
Paredes S, Ortiz D, Batista M. Dinámica del desarrollo vegetativo del cultivo
de banano mediante estimulación radical bajo riego por aspersión. Metropolitana de Ciencias Aplicadas.
2024; 7(1), 206-213.
https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=9288323